Wikipedia

Transfer DNA

Transfer-DNA'et (forkortet T-DNA) er det overførte DNA fra det tumorinducerende eller rodinducerende (Ti-/Ri-) plasmid fra nogle bakteriearter, såsom Agrobacterium tumefaciens og Rhizobium rhizogenes (tidligere kendt som Agrobacterium rhizogenes). T-DNA'et overføres fra bakterien til værtsplantens DNA i cellekernen hvor det integreres i plantens arvemasse (genom).[1]

Ti-plasmid med T-DNA region

Opbygning og funktion af T-DNA redigér

Dette specialiserede tumorinducerende plasmids egenskaber tilskrives to essentielle regioner, der er nødvendige for DNA-overførsel til værtscellen. T-DNA'et er således omkranset af 25 gentagende basepar i hver ende kaldet hhv. left border og right border. Overførslen initieres ved den højre grænse og afsluttes ved den venstre grænse og kræver vir-gener fra Ti-plasmidet.

Det bakterielle T-DNA er omkring 24.000 basepar langt[2][3] og indeholder gener udtrykt i planter, der koder for enzymer, der syntetiserer opiner og plantehormoner. Ved at overføre T-DNA'et til plantegenomet omprogrammerer bakterien plantecellerne til at vokse til en tumor og producere en unik fødekilde til bakterierne. Syntesen af plantehormonerne auxin og cytokinin af enzymer kodet i T-DNA'et gør det muligt for plantecellen at forvokse sig, og dermed danne krongalletumorer, der typisk induceres af infektion med Agrobacterium tumefaciens.[4] Rhizobium rhizogenes forårsager en lignende infektion kendt som skægrodssygdom (engelsk: hairy root disease). Opinerne er aminosyrederivater, der bruges af bakterien som en kilde til kulstof og energi. Denne naturlige proces med horisontal genoverførsel i planter bliver brugt som et værktøj til grundlæggende og anvendt forskning i plantebiologi gennem Agrobacterium tumefaciens-medieret gentransformation og mutagenese ved indsættelse af fremmed DNA.[5][6] Plantegenomer kan tilrettelægges ved anvendelse af Agrobacterium til levering af sekvenser beliggende i de binære T-DNA-vektorer.

Transformation i naturen redigér

Infektionsprocessen af T-DNA i værtscellen og integration i dens kerne involverer flere trin. Bakterien indtræffer i åbne sår på planten hvor den først formerer sig i saften fra såret før infektion og binder sig derefter til plantecellevæggene. Den bakterielle virulensgenekspression af ca. 10 operoner aktiveres ved tilstedeværelse af phenolforbindelser såsom acetosyringon udsendt af såret plantevæv og følger celle-celle-kontakt. Derefter fortsætter denne proces med den makromolekylære translokation fra Agrobacterium til cytoplasma af værtscellen, overførsel af T-DNA sammen med associerede proteiner (kaldet T-kompleks) til værtscellekernen efterfulgt af adskillelse af T-komplekset, stabil integration af T-DNA ind i værtsplantens genom og eventuelt udtryk af de overførte gener. Integrationen af T-DNA i et værtsgenom involverer dannelsen af et enkeltstrenget brud i DNA'et ved højre grænse af Ti-plasmidet. Dette brud skaber en region af enkeltstrenget DNA fra venstre kant af T-DNA genet over til højre kant, som blev skåret. Derefter binder enkeltstrengede bindingsproteiner sig til det enkeltstrengede DNA. DNA-syntese rykker den enkeltstrengede region, og derefter frigiver et andet hak ved venstre grænseregion det enkeltstrengede T-DNA-fragment. Yderligere kan dette fragment inkorporeres i et værtsgenom.[7]

Agrobacterium er kendt for at have udviklet et kontrolsystem, der bruger planteværtsfaktorer og celleprocesser til adskillige transportveje i forbindelse med forsvarsrespons til at invadere værtscellekernen. For at muliggøre integration af T-DNA i det ønskede værtsgenom udfører Agrobacterium flere interaktioner med værtsplantefaktorer.[7] For at interagere med værtsplanteproteiner er mange Agrobacterium virulensproteiner kodet af vir-gener. Agrobacterium vir-genekspression sker via VirA-VirG-sensoren, hvilket resulterer i dannelse af en mobil enkeltstrenget T-DNA-kopi (T-streng). En forarbejdet form af VirB2 er hovedkomponenten i T-komplekset, der kræves til transformation. VirD2 er det protein, der dækker 5'-enden af den overførte T-streng ved hjælp af kovalente bindinger og transporteres til værtscellens cytoplasma.[8][9] VirE2 er det enkeltstrengede DNA-bindende protein, der formentlig dækker T-strengen i værtscytoplasmaet ved kooperativ binding. Det ledes derefter ind i kernen via interaktioner med værtscelleproteiner såsom Importin α, bakteriel VirE3 og dynein-lignende proteiner. Adskillige andre bakterielle virulenseffektorer som VirB5, VirB7 (de mindre komponenter i T-komplekset), VirD5, VirE2, VirE3 og VirF, der også kan interagere med proteiner i værtsplanteceller.[10]

Anvendelse i bioteknologien redigér

Agrobacterium-medieret T-DNA-overførsel bruges i vid udstrækning som et værktøj inden for bioteknologien. I mere end to årtier er Agrobacterium tumefaciens blevet anvendt til at introducere gener i planter i forbindelse med forskning såvel som til kommerciel produktion af transgene afgrøder.[11] Ved gensplejsning fjernes de tumorfremmende gener og opinsyntesegenerne fra T-DNA'et og erstattes med et gen af interesse og/eller en selektionsmarkør, som er nødvendig for at fastslå, hvilke planter der er blevet transformeret med succes. Eksempler på selektionsmarkører omfatter neomycin fosfotransferase, hygromycin B fosfotransferase (som begge fosforylerer antibiotika) og fosfinothricin acetyltransferase (som acetylerer og deaktiverer fosfinothricin, en kraftig hæmmer af glutamin) eller herbicider såsom Basta eller Bialophos.[12] Et andet udvælgelsessystem, der kan anvendes, er brugen af metaboliske markører såsom phospho- mannose-isomerase.[13] Agrobacterium bruges derefter som vektor at overføre det manipulerede T-DNA til plantecellerne, hvor det integreres i plantegenomet. Denne metode kan bruges til at generere transgene planter, der bærer et fremmed gen. Agrobacterium tumefaciens er i stand til effektivt at overføre fremmed DNA til både en- og tokimbladede planter, mens de tager sig af kritisk vigtige faktorer såsom genotypen af planter, typer og aldre af inokuleret væv, slags vektorer , stammer af Agrobacterium, selektionsmarkørgener og selektive midler og forskellige betingelser for vævskultur.[4]

Den samme procedure for T-DNA-overførsel kan bruges til at forstyrre gener via mutagenese ved indsættelse af fremmed DNA.[6] Den inkorporerede T-DNA sekvens danner både en mutation, såvel som at dens indsættelse også 'mærker' [14] det berørte gen, hvilket muliggør dets isolering som T-DNA-flankerende sekvenser. Et reportergen kan kobles til den højre ende af T-DNA'et for at blive transformeret sammen med et plasmid-replikon og et selekterbart antibiotika (såsom hygromycin)-resistensgen og kan fremhæve ca. 30 % af den gennemsnitlige effektivitet med vellykkede T-DNA-inserts inducerede genfusioner i Arabidopsis thaliana.[15]

Omvendt genetik indebærer at teste den formodede funktion af et gen, der ér kendt ved at forstyrre det og derefter lede efter effekten af den inducerede mutation på testorganismens fænotype. T-DNA-mærkningsmutagenese involverer screening af populationer ved T-DNA-indsættelsesmutationer. Samlinger af kendte T-DNA-mutationer giver anlæg til at studere funktionerne af individuelle gener, modelleret efter modelplanten Arabidopsis thaliana.[16] Eksempler på T-DNA-indsættelsesmutationer i Arabidopsis thaliana omfatter dem, der er forbundet med mange slags varierende fænotyper, herunder kimplantedødelige, størrelsesvarianter, pigmentvarianter, embryodefekte, reduceret fertilitet og morfologisk eller fysiologisk afvigende planter.[[17]

Referencer redigér

  1. ^ Gelvin, Stanton B. (2017-11-27). "Integration of Agrobacterium T-DNA into the Plant Genome". Annual Review of Genetics. 51 (1): 195-217. doi:10.1146/annurev-genet-120215-035320. ISSN 0066-4197. PMID 28853920.
  2. ^ Barker RF, Idler KB, Thompson DV, Kemp JD (november 1983). "Nucleotide sequence of the tDNA region from theA grobacterium tumefaciens octopine Ti plasmid pTi15955". Plant Molecular Biology. 2 (6): 335-50. doi:10.1007/BF01578595. PMID 24318453. S2CID 26118909.
  3. ^ Gielen J, Terryn N, Villarroel R, Van Montagu M (1999-08-01). "Complete nucleotide sequence of the tDNA region of the plant tumour-inducing Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid pTiC58". Journal of Experimental Botany. 50 (337): 1421-1422. doi:10.1093/jxb/50.337.1421. ISSN 0022-0957.
  4. ^ a b Hiei Y, Komari T, Kubo T (september 1997). "Transformation of rice mediated by Agrobacterium tumefaciens". Plant Molecular Biology. 35 (1-2): 205-18. doi:10.1023/a:1005847615493. PMID 9291974. S2CID 19196285.
  5. ^ Zupan JR, Zambryski P (april 1995). "Transfer of tDNA from Agrobacterium to the plant cell". Plant Physiology. 107 (4): 1041-7. doi:10.1104/pp.107.4.1041. PMC 157234. PMID 7770515.
  6. ^ a b Krysan PJ, Young JC, Sussman MR (december 1999). "T-DNA as an insertional mutagen in Arabidopsis". The Plant Cell. 11 (12): 2283-90. doi:10.1105/tpc.11.12.2283. PMC 144136. PMID 10590158.
  7. ^ a b Lacroix B, Citovsky V (2013). "The roles of bacterial and host plant factors in Agrobacterium-mediated genetic transformation". The International Journal of Developmental Biology. 57 (6-8): 467-81. doi:10.1387/ijdb.130199bl. PMID 24166430.
  8. ^ Koukolíková-Nicola Z, Raineri D, Stephens K, Ramos C, Tinland B, Nester EW, Hohn B (februar 1993). "Genetic analysis of the virD operon of Agrobacterium tumefaciens: a search for functions involved in transport of T-DNA into the plant cell nucleus and in T-DNA integration". Journal of Bacteriology. 175 (3): 723-31. doi:10.1128/jb.175.3.723-731.1993. PMC 196211. PMID 8380800.
  9. ^ Arya A (februar 2017). "Agrobacterium Pathology and Ti Plasmid based Vector Design". High Value Notes. 4 (1): 1-24. doi:10.13140/RG.2.2.18345.49769/1.
  10. ^ Gelvin SB (marts 2003). "Agrobacterium-mediated plant transformation: the biology behind the "gene-jockeying" tool". Microbiology and Molecular Biology Reviews. 67 (1): 16-37, table of contents. doi:10.1128/mmbr.67.1.16-37.2003. PMC 150518. PMID 12626681.
  11. ^ Oltmanns H, Frame B, Lee LY, Johnson S, Li B, Wang K, Gelvin SB (marts 2010). "Generation of backbone-free, low transgene copy plants by launching T-DNA from the Agrobacterium chromosome". Plant Physiology. 152 (3): 1158-66. doi:10.1104/pp.109.148585. PMC 2832237. PMID 20023148.
  12. ^ Lee LY, Gelvin SB (februar 2008). "tDNA binary vectors and systems". Plant Physiology. 146 (2): 325-32. doi:10.1104/pp.107.113001. PMC 2245830. PMID 18250230.
  13. ^ Todd R, Tague BW (2001-12-01). "Phosphomannose isomerase: A versatile selectable marker forArabidopsis thaliana germ-line transformation". Plant Molecular Biology Reporter (engelsk). 19 (4): 307-319. doi:10.1007/bf02772829. ISSN 0735-9640. S2CID 46196053.
  14. ^ Liu YG, Shirano Y, Fukaki H, Yanai Y, Tasaka M, Tabata S, Shibata D (maj 1999). "Complementation of plant mutants with large genomic DNA fragments by a transformation-competent artificial chromosome vector accelerates positional cloning". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (11): 6535-40. Bibcode:1999PNAS...96.6535L. doi:10.1073/pnas.96.11.6535. PMC 26917. PMID 10339623.
  15. ^ Koncz C, Martini N, Mayerhofer R, Koncz-Kalman Z, Körber H, Redei GP, Schell J (november 1989). "High-frequency T-DNA-mediated gene tagging in plants". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 86 (21): 8467-71. Bibcode:1989PNAS...86.8467K. doi:10.1073/pnas.86.21.8467. PMC 298303. PMID 2554318.
  16. ^ Ben-Amar A, Daldoul S, Reustle GM, Krczal G, Mliki A (december 2016). "Reverse Genetics and High Throughput Sequencing Methodologies for Plant Functional Genomics". Current Genomics. 17 (6): 460-475. doi:10.2174/1389202917666160520102827. PMC 5282599. PMID 28217003.
  17. ^ Feldmann KA (1991-07-01). "T-DNA insertion mutagenesis in Arabidopsis: mutational spectrum". The Plant Journal (engelsk). 1 (1): 71-82. doi:10.1111/j.1365-313x.1991.00071.x. ISSN 1365-313X.

Yderligere læsning redigér

Hentet fra "https://da.wikipedia.org/w/index.php?title=Transfer_DNA&oldid=11607190"